碱基日读 每天读完真实文献,只讲有用的那一段

工具›实验台计算器

肽段碎片离子 m/z 计算器(b / y 离子 MS/MS 谱图注释)

输入单字母肽段序列,一键得到 b / y 离子的精确单同位素 m/z 值;支持氨甲基化 Cys 与氧化 Met,用于 LC-MS/MS 谱图手动注释与鉴定结果核实。

碎片离子是怎么产生的

在液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)实验中,肽段在碰撞池(碰撞诱导解离 CID、高能碰撞解离 HCD)中被活化,使肽键断裂,产生一系列碎片离子。碎裂最容易发生在酰胺键(CO—NH)处,断裂后:

对含 n 个残基的肽段,理论上产生 b₁ ~ b_{n-1} 和 y₁ ~ y_{n-1},共 2(n−1) 个单电荷离子。b₁ 和 y₁ 在实际谱图里通常很弱或缺失;b2、y2 及更高编号离子是主要分析对象。

核心公式(单同位素质量)

所用物理常数来源于 NIST Chemistry WebBook 和 Unimod 数据库:

b 离子(z = +1):取 N 端第 1 到第 i 个残基质量之和,加一个质子:

b_i = residue_mass[1] + residue_mass[2] + ... + residue_mass[i] + 1.007276

y 离子(z = +1):取 C 端最后 i 个残基质量之和,加水和一个质子:

y_i = residue_mass[n-i+1] + ... + residue_mass[n] + 18.010565 + 1.007276

多电荷碎片离子(z ≥ 2),质谱仪实际测量的 m/z:

b_i(z) = [ residue_sum(1..i)      + z × 1.007276 ] / z
y_i(z) = [ residue_sum(n-i+1..n)  + 18.010565 + z × 1.007276 ] / z

互补关系:同一断裂位置产生的 b_i(+1) 和 y_{n-i}(+1) 之和固定等于肽段中性质量加两个质子:

b_i + y_{n-i} = M_peptide + 2 × 1.007276
其中 M_peptide = Σ(全部 n 个残基质量) + 18.010565

这一关系可用来快速验证计算是否正确。

常见修饰的质量偏移

氨甲基化 Cys(carbamidomethylation,CAM):+57.021464 Da

碘乙酰胺(iodoacetamide)烷基化游离巯基时产生。几乎所有标准鸟枪法蛋白质组学流程都将其设为固定修饰,Cys 残基质量由 103.009185 Da 变为 160.030649 Da。本工具默认勾选此项;若样品制备中未做烷基化(如无还原步骤的流程),请手动改为「无」。

氧化 Met(oxidation):+15.994915 Da

样品制备中最常见的可变修饰,甲硫氨酸侧链硫原子被氧化。含氧化 Met 的肽段与未氧化版本往往同时出现,数据库搜索通常将其设为可变修饰。本工具支持指定具体位置(1 起编号),以便对谱图中特定肽段形式进行验证。

适用范围与局限

  1. 仅适用于高分辨质谱(Orbitrap、Q-TOF 等),使用单同位素质量。离子阱等低分辨仪器应使用平均质量,本工具不做此换算。
  2. 仅计算 b 和 y 离子。CID/HCD 同时产生 a 离子(b₋CO,−27.995 Da)、水失离子(−18.011 Da)、氨失离子(−17.027 Da)等,谱图注释时需结合这些中性丢失。
  3. 仅支持标准 20 种氨基酸;不支持硒代半胱氨酸(U)、吡咯赖氨酸(O)及非天然氨基酸。
  4. 仅适用于线性肽;环肽或非肽键键型不适用。
  5. L 与 I 质量相同(113.084064 Da),CID/HCD 固有无法区分,属于质谱本身的局限。

验证算例

以经典测试肽段 PEPTIDE(无修饰,7 个残基)为例,残基质量(Da):

P = 97.052764   E = 129.042593   P = 97.052764
T = 101.047679   I = 113.084064   D = 115.026943   E = 129.042593

计算 b2 和 y2(+1 价):

b2 = 97.052764 + 129.042593 + 1.007276 = 227.102633 Da
y2 = 115.026943 + 129.042593 + 18.010565 + 1.007276 = 263.087377 Da

互补关系验证(b6 与 y1):

b6 = 97.052764+129.042593+97.052764+101.047679+113.084064+115.026943 + 1.007276
   = 653.314083 Da

y1 = 129.042593 + 18.010565 + 1.007276 = 148.060434 Da

b6 + y1 = 801.374517 Da

M_peptide = 781.349400 + 18.010565 = 799.359965 Da
M + 2H    = 799.359965 + 2 × 1.007276 = 801.374517 Da  ✓

两者完全吻合,验证公式无误。

常见问题

谱图里只看到了部分离子,是工具算错了吗?

不是。本工具输出的是全部理论离子;实际谱图里不一定都出现——碎裂效率因序列和仪器参数而异,通常 b2 和 y_{n-1} 最强,b1 与 y1 常常很弱甚至缺失。若某位置离子系统性缺失,有时提示该处存在未标注的修饰。

L 和 I 的质量一样,工具无法区分,怎么办?

亮氨酸(L)和异亮氨酸(I)单同位素残基质量完全相同(均为 113.084064 Da),CID/HCD 碎裂本就无法区分,这是鸟枪法蛋白质组学的固有局限。区分需要 ECD/ETD 碎裂或化学衍生化,不是工具的问题。

为什么 Cys 默认选氨甲基化?

标准蛋白质组学流程在还原后用碘乙酰胺(iodoacetamide)烷基化游离巯基,固定增加 +57.021 Da。若样品做了此处理而不勾选,所有含 Cys 的碎片 m/z 都会低 57 Da,对不上谱图。若样品未烷基化,请改为「无」。

计算值和谱图观测值差了一点,多大误差属于正常?

Orbitrap 典型准确度 < 5 ppm,在 m/z 500 处约 0.0025 Da;Q-TOF 约 5–10 ppm。若偏差 > 20 ppm,通常说明存在未标注修饰或该峰对应另一离子,而不是计算错误。

相关工具

蛋白质净电荷计算器(pH 依赖性)

输入氨基酸序列与目标 pH,按 Henderson-Hasselbalch 方程估算各可电离基团的带电比例与理论净电荷,辅助离子交换树脂选型与等电点区间分析。

蛋白质纯化追踪表:比活度、得率与纯化倍数在线计算

输入各纯化步骤的体积、蛋白浓度与酶活,一键算出比活度、得率与纯化倍数,生成论文规范的纯化追踪表。

SDS-PAGE 凝胶配制计算器(分离胶与浓缩胶)

输入分离胶丙烯酰胺百分比与每块体积,立即得到各试剂取样量——丙烯酰胺、Tris、SDS、APS、TEMED 与加水量,分离胶与浓缩胶同时给出,支持多块预混。

没有广告,不收集数据,每个公式都验算过。维护它需要持续投入——如果帮你省了时间,请杯咖啡。
请杯咖啡 了解更多 →