圆二色光谱平均残基椭圆率计算器(CD [θ]MRE 与 Δε)
公式与单位
CD 分光光度计的原始输出是椭圆率 θ(millidegrees, mdeg),它同时取决于蛋白质浓度、光程和蛋白大小,无法直接在不同样品之间比较。要与文献参考值对比或输入反卷积软件,需换算为归一化的平均残基摩尔椭圆率 [θ]_MRE(mean residue ellipticity)。
第一步:平均残基分子量(Mean Residue Weight, MRW)
MRW (g/mol) = 蛋白分子量 (Da) / 氨基酸残基数
蛋白质的 MRW 一般在 110–115 g/mol 之间,具体值依序列而定。
第二步:平均残基摩尔椭圆率
[θ]_MRE = θ_obs(mdeg) × MRW / (10 × c(mg/mL) × l(cm))
单位:deg·cm²·dmol⁻¹(每摩尔残基)
第三步(可选):换算为摩尔圆二色性 Δε
Δε (L·mol⁻¹·cm⁻¹) = [θ]_MRE / 3298.2
换算因子 3298.2 来自椭圆率(角度制)与吸光度差的几何关系,即 (180/π) × (ln10/4) × 100(Greenfield, 2006, PMID: 17406547)。Δε 是量子化学计算与 DICHROWEB 等反卷积软件的标准输入格式。
适用范围
- 适用于单一蛋白质溶液在任意波长的单点换算;输入的 θ 必须是已减去空白缓冲液信号之后的净椭圆率
- 适用于肽段,但 MRW 应按实际序列计算,不应直接使用 110 g/mol 的近似值
- 不适用于多组分混合液,或尚未做基线校正的原始仪器读数
光程单位混淆是 CD 换算中最高频的错误:本工具要求光程以厘米(cm)输入。远紫外 CD(< 250 nm)常用 1 mm 石英比色皿,填 0.1;高吸收样品或微量样品用 0.1 mm 超薄皿,填 0.01。单位填错一位,结果差一个数量级,而数值本身仍落在「合理区间」内,不易察觉。
若手头只有摩尔浓度,可先换算:
c(mg/mL) = c(µM) × MW(Da) × 1×10⁻³
可以验算
以下参数可按公式手算,对应典型 α-螺旋蛋白在 222 nm 处的信号:
θ_obs = −30 mdeg,c = 0.1 mg/mL,l = 0.1 cm,MW = 11,000 Da,n_res = 100
MRW = 11000 / 100 = 110 g/mol
[θ]_MRE = (−30) × 110 / (10 × 0.1 × 0.1)
= −3300 / 0.1
= −33,000 deg·cm²·dmol⁻¹
Δε = −33,000 / 3298.2 ≈ −10.01 L·mol⁻¹·cm⁻¹
−10 L·mol⁻¹·cm⁻¹ 正是 α-螺旋在 222 nm 处每残基的典型 Δε 值(Greenfield, 2006)。
常见问题
为什么要用平均残基椭圆率,而不是直接报告摩尔椭圆率?
蛋白质的 CD 信号来自主链每一个酰胺键,百残基蛋白与千残基蛋白的摩尔椭圆率天然相差十倍。将其归算为「每摩尔残基的贡献」[θ]MRE 后,大小不同的蛋白和不同折叠条件下的二级结构特征才具有可比性;文献中所有 α-螺旋 / β-折叠的参考值也均以 [θ]MRE 给出。
光程单位填错会造成多大误差?
光程必须以厘米(cm)输入:1 mm 石英皿 = 0.1 cm,0.1 mm 超薄皿 = 0.01 cm。若将 0.1 mm 误填为 0.1(当成厘米),结果会高出 10 倍;若将毫米直接当厘米填,则低 10 倍。这是 CD 换算中最常见的系统误差,且结果看起来仍在正常数量级内——不会触发明显异常。
蛋白浓度用哪种方法测最准确?
[θ]MRE 对浓度误差的传播系数为 1:浓度低估 10% 直接导致结果高估 10%。推荐 A280 配合已知消光系数(可用本站 protein-params 工具从序列计算 ε280),或氨基酸分析。Bradford 与 BCA 因染料和不同蛋白的结合差异,误差可达 15–20%,只在无法获得精确 ε280 时作为替代。
输出为负数是测量错误吗?
不是。圆二色性信号可正可负,取决于构象和波长:α-螺旋在 208 nm 与 222 nm 呈负峰,β-折叠在 215–220 nm 呈负峰,无规卷曲在 200 nm 附近给出强负峰。负号是结构的特征指纹,不表示测量异常。
Δε 与 [θ]MRE 哪个更常用,有什么区别?
[θ]MRE(deg·cm²·dmol⁻¹)是实验报道的主流格式,几乎所有文献的参考光谱均采用此单位。Δε(L·mol⁻¹·cm⁻¹)由量子化学从头计算和 DICHROWEB、CDPro 等反卷积软件使用;两者通过 [θ]MRE = 3298.2 × Δε 精确互算,并不携带额外信息。