DNA 序列 GC 含量与 Tm 值在线计算
GC 含量决定双链的稳定性:G-C 之间三个氢键,A-T 只有两个,所以 GC 越高,解链温度越高。 引物设计一般把 GC% 控制在 40–60%。
Tm(解链温度)这里给两个经验公式,它们的适用长度不同,别用错:
- Wallace 规则,适用于 14 nt 以下的短寡核苷酸:
Tm = 2×(A+T) + 4×(G+C) - GC 经验公式,适用于约 14–50 nt:
Tm = 64.9 + 41×(G + C − 16.4) / N
需要说清楚的是:这两个都是经验估算,没有考虑盐浓度、引物浓度和最近邻热力学参数。 真要定 PCR 退火温度,请用 最近邻法 Tm 计算器,或直接做梯度 PCR。 本工具的定位是快速筛掉明显不合格的候选序列。
分子量按单链计算,同时给出两个值:含 5′ 磷酸的形式,等于各残基质量之和再加一个水分子; 以及 5′-OH 的形式,比前者少一个 HPO₃(79.98)。 合成公司发来的引物默认是 5′-OH,订购单上 μg 与 nmol 的换算用的是后一个值。 拿到引物后要配多少体积的母液,见 引物复溶与稀释计算器。
两个公式差多少:一个真实例子
20 nt 引物 GCATCGATCGATCGATCGAT,GC 含量正好 50%:
Wallace 规则 60.0 °C
GC 经验公式 51.8 °C
差了 8.2 °C。 退火温度通常取 Tm 减 5 °C 左右,这个差距足以决定 一次 PCR 是特异扩增还是满板杂带。
为什么 Wallace 偏高
Wallace 规则给出的估计对应的是高盐环境下、一条链被固定的情形(约 0.9 M 盐)。 实际 PCR 里两条链都在溶液中、盐浓度低得多,真实 Tm 比 Wallace 值约低 7–8 °C—— 这正好解释了上面那个差距。
所以:Wallace 适合心算筛选,不适合定退火温度。
真正该用的方法
定 PCR 条件请用最近邻热力学模型(nearest-neighbor,SantaLucia 参数集)。 它考虑相邻碱基的堆积作用、引物浓度、盐浓度与二价镁离子, 是各家引物设计软件和厂商 Tm 计算器的实际算法。 本站的 最近邻法 Tm 计算器 就是做这个的;本工具不做, 因为它需要一整套实验测定的热力学参数表,且结果强烈依赖你实际的反应体系。
本工具的定位是快速筛掉明显不合格的候选序列:GC 太高太低、长度不对、组成极端。 选定候选之后,用厂商计算器或直接做梯度 PCR 定退火温度。
GC 含量之外,引物还要看什么
- 3′ 端最后 5 个碱基里有 1–2 个 G/C(GC clamp),有助于结合牢固; 但连续 3 个以上 G/C 反而容易错配延伸。
- 避免单碱基连排(如 GGGG),容易形成二级结构或滑移。
- 一对引物的 Tm 差控制在 5 °C 以内,否则退火温度对其中一条不合适。
- 自身互补与引物二聚体用引物二聚体检测单独查—— GC 与 Tm 都合格的引物照样可能高度自互补,这一页正文里就有这样的例子。
常见问题
两个 Tm 结果不一样,该信哪个?
看序列长度。14 nt 以下用 Wallace 规则,14–50 nt 用 GC 经验公式。两个都是估算,定退火温度请用最近邻法 Tm 计算器,或以梯度 PCR 实测结果为准。
为什么我的引物 GC 含量合格却扩增不出来?
GC% 只是最粗的一层筛选。还要检查 3' 端是否形成发夹、引物二聚体、以及在模板上是否唯一。本工具不做这些检查。
为什么我算的 Tm 和厂商网站不一样?
因为算法不同。厂商用最近邻热力学模型,会把引物浓度、Na⁺、Mg²⁺ 浓度都算进去;本工具给的是两个不含这些参数的经验公式。差 5–10 °C 是正常的。定实验条件以厂商计算器或梯度 PCR 为准。
分子量为什么按单链算?
引物、探针、单链寡核苷酸订购时给的都是单链分子量,用来把 nmol 换算成 μg。双链 DNA 要把两条链加起来,那是另一个场景(本站的核酸浓度换算工具按双链处理)。另外注意选对末端形式:合成引物默认 5′-OH,只有明确订了磷酸化修饰才带 5′ 磷酸,两者相差一个 HPO₃(79.98 g/mol),20 nt 的引物上约合 1.3%。
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